Аграрный
Вестник
Урала

Всероссийский научный аграрный журнал

Издание зарегистрировано в Министерстве Российской Федерации
по делам печати, телерадиовещания и средствам массовых коммуникаций.
Свидетельство о регистрации: ПИ № 77-12831 от 31 мая 2002 г.
Подписной индекс в каталоге «Пресса России» — 16356
ISSN 1997 - 4868 (Print)

Журнал включен в Перечень ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, в которых должны быть опубликованы основные научные результаты диссертаций на соискание ученых степеней доктора и кандидата наук
Журнал включен в Российский индекс научного цитирования.
Входит в список ВАК (от 25.09.2017), №291

ISSN 2307-0005 (Online)
Key title: Agrarnyj vestnik Urala (Online)
Abbreviated key title: Agrar. vestn. Urala (Online)

Аграрный вестник Урала № 01 (168) 2018

Биология и биотехнологии

Сивкова Т. Н. Доктор биологических наук, доцент, Пермская ГСХА

Лазарева О. И. аспирант Пермский государственный аграрно-технологический университет имени академика Д. Н. Прянишникова

Прохорова Т. С. кандидат биологических наук, доцент Пермский государственный аграрно-технологический университет им. акад. Д. Н. Прянишникова

Бережко В. К. доктор биологических наук, профессор Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений имени К. И. Скрябина ФАНО России

Написанова Л. А. кандидат биологических наук Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений имени К. И. Скрябина ФАНО России

УДК:УДК 616-095[576.89: 579.8](57.085.2)

ВЛИЯНИЕ СОМАТИЧЕСКОГО ЭКСТРАКТА АNISAKIS SIMPLEX L3 НА МИКРООРГАНИЗМЫ IN VITRO

 В статье рассматривается влияние соматического экстракта Anisakis simplex L3 на культуры клеток микроорганизмовin vitro. Ранее установлено, что под действием указанного экстракта нарушаетсяи угнетается процесс деления эукариотических клеток. Сведений о механизмах взаимодействиясоматических экстрактов гельминтов и микроорганизмов очень мало. Предполагается,что соматический экстракт из анизакид оказывает негативное влияние намикроорганизмы за счет входящих в его состав белковых компонентов иметаболитов. Целью исследования являлось изучение влияния экстракта на культурыклеток разнообразных микроорганизмов, как по морфологическим признакам, так и поустойчивости к факторам внешней среды. Экстракт готовили из личинок анизакид,извлеченных из замороженной путассу (Micromesistiuspoutassou), проверялина стерильность и безвредность, определяли содержание белка. Для исследованияиспользовали суточные культуры бактерий: микрококки Micrococcus sp., палочки  Escherichia coli,Proteus vulgaris,Salmonella tiphimurium ибациллы Bacillus subtilis. При культивировании микроорганизмов с дисками, пропитаннымиантигенным экстрактом анизакид, в термостате при +37° С через 12 часов выявленазона задержки роста у Micrococcus sp., E.coli и P. vulgaris. На рост бактерий палочек S. tiphimurium, бацилл B. subtilisэкстракт влияния не оказывал. Формирование выраженной зоны стерильности свидетельствуето наличии в составе белкового экстракта биологически-активных компонентов, обладающихбактериостатическим действием. Обсуждаются механизмы бактериостатическогодействия соматического экстракта. Полученные в ходе эксперимента данныеподтверждают антагонистические отношения белковых продуктов личинок Anisakis simplex L3 и микроорганизмов, согласующихся слитературными данными. Выявлена различная степень активности антигеновсоматического экстракта из анизакид на культуры микроорганизмов, наибольшеевлияние экстракт оказал на культуры палочек E.coli и микрококков Micrococcus sp. Полученныерезультаты можно использовать для разработки модели бактериальных клеток кактест объектов для оценки антигенной активности соматических,экскреторно-секреторных экстрактов и метаболитов различных гельминтов.


Ключевые слова:

Ключевые слова: соматический экстракт, Anisakis simplex L3, метаболиты, бактерии, бациллы, бактериостатическое действие.


Список литературы:

Литература

1. МУК 4.2.1890-04. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам : методические указания. М. : Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004. 125 c.

2. Волкова Л. В., Гришина Т. А., Волков А. Г. Низкомолекулярные катионные пептиды лейкоцитов, индуцированные различными антигенами // Вестник ПНИПУ. Химическая технология и биотехнология. 2015. № 4. С. 35–48.

3. Сивкова Т. Н. Получение и характеристика антигенов гельминтов : учебно-методическое пособие / сост. Т. Н. Сивкова. Пермь : Пермская ГСХА, 2009. 14 с.

4. Сивкова Т. Н. Кариопатическое и патоморфологическое действие продуктов метаболизма личинок анизакид : монография. Пермь : Пермская ГСХА, 2011. 132 с.

5. Abner S. R., Parthasarathy G., Hill D. E., Mansfield L. S. Trichuris suis: detection of antibacterial activity in excretory-secretory products from adults // Exp. Parasitol. 2001. No. 99. Р. 26–36.

6. Andersson M., Boman A., Boman H. H. Ascaris nematodes from pig and human make three antibacterial peptides: isolation of cecropin P1 and two ASABF peptides // Cell. Mol. Life Sci. 2003. No. 60. Р. 599–606.

7. Audicana M. T., Kennedy M. W. Anisakis simplex: from obscure infectious worm to inducer of immune hypersensitivity // Clin Microbiol. Rev. 2008. No. 21. Р. 360–379.

8. Belas R., Manos J., Suvanasuthi R. Proteus mirabilis ZapA metalloprotease degrades a broad spectrum of substrates, including antimicrobial peptides // Infect. Immun. 2004. No. 72. Р. 5159–5167.

9. Delmar J. A., Su C. C., Yu E. W. Bacterial multidrug efflux transporters // Annu. Rev. Biophys. 2014. No. 43. Р. 93–117.

10. Drake L., Korchev Y., Bashford L., Djamgoz M., Wakelin D., Ashall F. et al. The major secreted product of the whipworm, Trichuris, is a pore-forming protein // Proc. Biol. Sci. 1994. No. 257. Р. 255–261.

11. Eberle R., Brattig N.W., Trusch M., Schlüter H., Achukwi M. D., Eisenbarth A., Renz A., Liebau E., Perbandt M., Betzel C. Isolation, identification and functional profile of excretory-secretory peptides from Onchocerca ochengi // Acta Trop. 2015. No. 142. Р. 156–166.

12. Fæste C. K., Jonscher K. R., Dooper M. et al. Characterisation of potential novel allergens in the fish parasite Anisakis simplex // EuPA Open Proteomics. 2014. No. 4. Р. 140–155.

13. Fæste C. K. Fish feed as source of potentially allergenic peptides from the fish parasite Anisakis simplex (S. L.) // Animal feed science and technology. 2015. No. 202. Р. 52–61.

14. Haarder S., Kania P. W., Holm T. L., Gersdorff J. L., Buchmann K. Effect of ES products from Anisakis (Nematoda: Anisakidae) on experimentally induced colitis in adult zebra fish // Parasite Immunol. 2017. V. 39. I. 10. P. 66.

15. Joo H. S., Fu C. I., Otto M. Bacterial strategies of resistance to antimicrobial peptides // Philos Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 2016. No. 26. P. 1–11.

16. Kato Y. Humoral defense of the nematode Ascaris suum: antibacterial, bacteriolytic and agglutinating activities in the body fluid // Zoolog. Sci. 1995. No. 12. Р. 225–230.

17. Mehrdana F., Buchmann K. Excretory secretory products of anisakid nematodes: biological and pathological roles // Acta Veterinaria Scandinavica. 2017. No. 59:42. Р. 1–12.

18. Midha A., Schlosser J., Hartmann S. Reciprocal Interactions between Nematodes and Their Microbial Environments // Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2017. V. 7:144. Р. 1–20.

19. Peschel A. et al. Staphylococcus aureus resistance to human defensins and evasion of neutrophil killing via the novel virulence factor Mpr F is based on modification of membrane lipids with L-lysine // J. Exp. Med. 2001. No. 193. Р. 1067–1076.

20. Reynolds L. A., Finlay B. B., Maizels R. M. Cohabitation in the intestine: interactions between helminth parasites, bacterial microbiota and host immunity // Journal of immunology. 2015. 195. No. 9. Р. 4059–4066.

21. Schmidtchen A., Frick I. M., Andersson E., Tapper H., Bjorck L. Proteinases of common pathogenic bacteria degrade and inactivate the antibacterial peptide LL-37 // Mol. Microbiol. 2002. No. 46. Р. 157–168.

22. Silhavy T. J., Kahne D., Walker S. The bacterial cell envelope. Cold Spring Harb. // Perspect. Biol. 2010. No. 2 (5). P. 87.

23. Shelton C. L., Raffel F. K., Beatty W. L., Johnson S. M., Mason K. M. Sap transporter mediated import and subsequent degradation of antimicrobial peptides in Haemophilus // PLoS Pathog. 2011. No. 7 (11). P. 44.

24. Svanevik C. S., Lunestad B. T., Levsen A. Effect of Anisakis simplex (sl) larvae on the spoilage rate and shelf-life of fish mince products under laboratory conditions // Food Control. 2014. No. 46. Р. 121–126.

25. Tarr D. E. K. Distribution and characteristics of ABFs, cecropins, nemapores, and lysozymes in nematodes // Dev. Comp. Immunol. 2012. No. 36. Р. 502–520.

26. Wardlaw A. C., Forsyth L. M., Crompton D.W. Bactericidal activity in the pig roundworm Ascaris suum // J. Appl. Bacteriol. 1994. No. 76. Р. 36–41.

27. Zhang H., Yoshida S., Aizawa T., Murakami R., Suzuki M., Koganezawa N. et al. In vitro antimicrobial properties of recombinant ASABF, an antimicrobial peptide isolated from the nematode Ascaris suum // Antimicrob. Agents Chemother. 2000. No. 44. Р. 2701–2705.


Скачать статью в PDF:

6.pdf (510.8 КБ)

В нашей базе 2883 авторов

На сайте опубликовано 2716 статей в 122 выпусках.

Bg