Аграрный вестник Урала № 02 (181) 2019
Биология и биотехнологииУДК:616-095[576.89: 579.8](57.085.2)
ВЛИЯНИЕ СОМАТИЧЕСКОГО ЭКСТРАКТА АNISAKIS SIMPLEX L3 НА МИКРООРГАНИЗМЫ IN VITRO
В статье рассматривается влияние соматическогоэкстракта Аnisakis simplex L3 на культурыклеток микроорганизмов in vitro. Ранее установлено, что под действием указанногоэкстракта нарушается и угнетается процесс деления эукариотических клеток. Сведенийо механизмах взаимодействия соматических экстрактов гельминтов и микроорганизмовочень мало. Предполагается, что соматический экстракт из анизакид оказываетнегативное влияние на микроорганизмы за счет входящих в его состав белковых компонентови метаболитов. Целью исследования являлось изучение влияния экстракта накультуры клеток разнообразных микроорганизмов, как по морфологическим признакам,так и по устойчивости к факторам внешней среды. Экстракт готовили из личиноканизакид, извлеченных из замороженной путассу (Micromesistiuspoutassou), проверяли на стерильность ибезвредность, определяли содержание белка. Для исследования использовали суточныекультуры бактерий: микрококки Micrococcus sp.,палочки Escherichia coli, Proteus vulgaris, Salmonella tiphimurium и бациллы Bacillus subtilis.При культивировании микроорганизмовс дисками, пропитанными антигенным экстрактом анизакид, в термостате при +37° Счерез 12 часов выявлена зона задержки роста у Micrococcus sp., E. coli и P. vulgaris. На рост бактерий палочекS. tiphimurium, бацилл B. subtilis экстракт влияния неоказывал. Формирование выраженной зоны стерильности свидетельствует о наличии всоставе белкового экстракта биологически-активных компонентов, обладающихбактериостатическим действием. Обсуждаются механизмы бактериостатическогодействия соматического экстракта.
Ключевые слова:
соматический экстракт, Аnisakis simplex L3, метаболиты, бактерии, бациллы, бактериостатическое действие.
Список литературы:
1. МУК 4.2.1890-04. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам: методические указания. – М. : Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004.
2. Волкова Л. В., Гришина Т. А., Волков А. Г. Низкомолекулярные катионные пептиды лейкоцитов, индуцированные различными антигенами // Вестник ПНИПУ. Химическая технология и биотехнология. 2015. № 4. С. 35–48.
3. Сивкова Т. Н. Получение и характеристика антигенов гельминтов: учебно-методическое пособие. – Пермь : Изд-во Пермской ГСХА, 2009. – 14 с.
4. Сивкова Т. Н., Бережко В. К. Кариопатическое и патоморфологическое действие продуктов метаболизма личинок анизакид: монография. – Пермь : Изд-во Пермской ГСХА, 2011. – 132 с.
5. Abner S. R., et al. Trichuris suis: detection of antibacterial activity in excretory-secretory products from adults. Exp. Parasitol. 2001. No. 99. Рp. 26–36.
6. Andersson M., Boman A., Boman H. H. Ascaris nematodes from pig and human make three antibacterial peptides: isolation of cecropin P1 and two ASABF peptides. Cell. Mol. Life Sci. 2003. No. 60. Рp. 599–606.
7. Audicana M. T., Kennedy M. W. Anisakis simplex: from obscure infectious worm to inducer of immune hypersensitivity. Clin Microbiol. Rev. 2008. No. 21. Рp. 360–379.
8. Belas R., Manos J., Suvanasuthi R. Proteus mirabilis ZapA metalloprotease degrades a broad spectrum of substrates, including antimicrobial peptides. Infect. Immun. 2004. No. 72. Рp. 5159–5167.
9. Delmar J. A., Su C. C., Yu E. W. Bacterial multidrug efflux transporters. Annu. Rev. Biophys. 2014. No. 43. Рp. 93–117.
10. Drake L., et al. The major secreted product of the whipworm, Trichuris, is a pore-forming protein. Proc. Biol. Sci. 1994. No. 257. Рp. 255–261.
11. Eberle R., et al. Isolation, identification and functional profile of excretory-secretory peptides from Onchocerca ochengi. Acta Trop. 2015. No. 142. Рp. 156–166.
12. Fæste C. K., et al. Characterisation of potential novel allergens in the fish parasite Anisakis simplex. EuPA Open Proteomics. 2014. No. 4. Рp. 140–155.
13. Fæste C. K. Fish feed as source of potentially allergenic peptides from the fish parasite Anisakis simplex (S.L.). Animal feed science and technology. Elsevier Science Publishing Company, Inc. 2015. No. 202. Рp. 52–61.
14. Haarder S., et al. Effect of ES products from Anisakis (Nematoda: Anisakidae) on experimentally induced colitis in adult zebra fish. Parasite Immunol. 2017. Vol. 39, I. 10. DOI 10.1111/pim.12456.
15. Joo H. S., Fu C. I., Otto M. Bacterial strategies of resistance to antimicrobial peptides. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2016. No. 26. 371 (1695). Pp. 1–11. DOI 10.1098/rstb.2015.0292.
16. Kato Y. Humoral defense of the nematode Ascaris suum: antibacterial, bacteriolytic and agglutinating activities in the body fluid. Zoolog. Sci. 1995. No. 12. Рp. 225–230.
17. Mehrdana F., Buchmann K. Excretory/secretory products of anisakid nematodes: biological and pathological roles. Acta Veterinaria Scandinavica. 2017. No. 59:42. Рp. 1–12. DOI 10.1186/s13028-017-0310-3.
18. Midha A., Schlosser J., Hartmann S. Reciprocal Interactions between Nematodes and Their Microbial Environments. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2017. Vol. 7:144. Рp. 1–20. DOI: 10.3389/fcimb.2017.00144.
19. Peschel A., et al. Staphylococcus aureus resistance to human defensins and evasion of neutrophil killing via the novel virulence factor Mpr F is based on modification of membrane lipids with L-lysine. J. Exp. Med. 2001. No. 193. Рp. 1067–1076.
20. Reynolds L. A., Finlay B. B., Maizels R. M. Cohabitation in the intestine: interactions between helminth parasites, bacterial microbiota and host immunity. Journal of immunology. 2015. 195. No. 9. Рp. 4059–4066.
21. Schmidtchen A., et al. Proteinases of common pathogenic bacteria degrade and inactivate the antibacterial peptide LL-37. Mol. Microbiol. 2002. 46. Рp. 157–168.
22. Silhavy T. J., Kahne D., Walker S. The bacterial cell envelope. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2010 2 (5):a000414. DOI 10.1101/cshperspect.a000414.
23. Shelton C. L. Sap transporter mediated import and subsequent degradation of antimicrobial peptides in Haemophilus. PLoS Pathog. 2011 7(11):e1002360. DOI 10.1371/journal.ppat.1002360.
24. Svanevik C. S., Lunestad B.T., Levsen A. Effect of Anisakis simplex (sl) larvae on the spoilage rate and shelf-life of fish mince products under laboratory conditions. Food Control. 2014. No. 46. Рp. 121–126.
25. Tarr D. E. K. Distribution and characteristics of ABFs, cecropins, nemapores, and lysozymes in nematodes. Dev. Comp. Immunol. 2012. No. 36. Рp. 502–520.
26. Wardlaw A. C., Forsyth L. M., Crompton D. W. Bactericidal activity in the pig roundworm Ascaris suum. J. Appl. Bacteriol. 1994. No. 76. Рp. 36–41.
27. Zhang H., et al. In vitro antimicrobial properties of recombinant ASABF, an antimicrobial peptide isolated from the nematode Ascaris suum. Antimicrob. Agents Chemother. 2000. No. 44. Рp. 2701–2705.
Скачать статью в PDF:
